Инструменты для забора материала мазка для микроскопии

Обновлено: 11.01.2025

Инструменты для забора материала мазка для микроскопии

В материале даны общие рекомендации по взятию мазков из урогенитального тракта для микроскопических исследований. Просим тщательно соблюдать данные рекомендации для повышения точности исследования.

Приготовление мазка — это нанесение отделяемого, полученного с поверхностей слизистых оболочек, на предметное стекло. Микроскопическое исследование включает не только идентификацию эпителия, микроорганизмов и других морфологических частиц, но также оценку их количества и соотношения. Качество мазка зависит от физиологического состояния пациента на момент взятия мазка. Наиболее информативным может быть клинический материал, если он получен при следующих условиях:

• мазки взяты при наличии клинических признаков заболевания;

• пациент не использовал местного лечения минимум в течение последних 48–72 часов;

• у женщин при исследовании материалов из урогенитального тракта взятие образцов желательно проводить приблизительно в середине менструального цикла (если заболевание не имеет явных проявлений) или в дни, когда нет кровянистых выделений (при обострении процесса);

• у мужчин при исследовании материалов взятие образцов из уретры необходимо проводить при условии задержки мочеиспускания не менее 3–4 часов;

• пациент не принимал душ в течение 24 часов.

Перед взятием образца важно понимать, какой материал должен быть взят, и что предполагается обнаружить. Обычно во время обследования пациента необходимо брать несколько клинических образцов (не только для микроскопии, но также и для других лабораторных исследований). Важно помнить, что:

• Материал из уретры для микроскопического исследования берется раньше всех других уретральных образцов или сразу же после взятия выделений или проб для культурального исследования на гонококки.

• Материал для приготовления нативного мазка из влагалища берется раньше всех других вагинальных проб. Участок влагалища, с которого нужно взять пробу, зависит от клинической ситуации. Если имеются обильные выделения и подозревается трихомонадная или кандидозная инфекция, образец берется из заднего свода, где концентрация предполагаемого инфекционного агента наибольшая. Если количество выделений обычное, образец следует брать с боковой стенки влагалища. Этот клинический материал даст наиболее надежную информацию о состоянии влагалища в данный момент.

• Образец из шейки матки для микроскопического исследования берется раньше всех других цервикальных образцов или сразу же после взятия мазка для культурального исследования на гонококки.

• Предметные стекла должны быть сухими, чистыми, не поцарапанными (оптимально применять новые стекла для каждого нового пациента).

• Мазок наносится тонким слоем только на одну сторону предметного стекла.

• Если количество материала небольшое, или Вы хотите поместить на одно стекло несколько образцов материала из разных локализаций у одного пациента, материал должен наноситься ближе к центру стекла в заранее обозначенных областях.

• Физиологический раствор должен быть теплым (оптимально 37°С). Эта температура позволяет легче распознать подвижные трихомонады.

Клинический материал можно получать с помощью пластиковой бактериологической петли или ватного/дакронового тампона. Предпочтение во всех случаях следует отдавать дакроновым тампонам. При использовании бактериологической петли материал наносится на предметное стекло штриховыми движениями тонким слоем. Ватный/дакроновый тампон прокатывается по стеклу для перенесения материала. Все мазки, приготовленные для направления в лабораторию, должны быть высушены на воздухе, промаркированы и, при необходимости, зафиксированы.

Взятие материала для микроскопии нативных препаратов

Для микроскопии влажных нативных препаратов использует­ся отделяемое влагалища у женщин. У мужчин прямая микроско­пия влажных мазков проводится при наличии обильных выделе­ний из уретры с исследованием свободного отделяемого или смыва.

Вагинальный образец для приготовления влажного (нативного) мазка берется в зеркалах бактериологической петлей объемом 10 мкл с определенного анатомического участка (задний или бо­ковой свод). Материал из уретры берется бактериологической петлей объемом 1 мкл. Из препуциального мешка материал бе­рется ватным/дакроновым тампоном.

На предметное стекло помещается капля теплого физиологи­ческого раствора (оптимально 37°С). Вагинальные или уре­тральные выделения перемешиваются с каплей физиологиче­ского раствора, накрываются покровным стеклом и немедленно просматриваются с использованием светового микроскопа. Если врач не владеет методом прямой микроскопии, выделения поме­щаются в пробирку с теплым физиологическим раствором и не­медленно направляются в лабораторию для микроскопического исследования.

Взятие материала для микроскопии окрашенных препаратов у мужчин

Образец из уретры для окрашивания по Граму или метиленовым синим берется с помощью бактериологической петли объе­мом 1 мкл. У мужчин при наличии выделений из уретры поверх­ность головки и область наружного отверстия уретры должны быть очищены с помощью марлевого тампона, крайняя плоть отведена назад для предупреждения контаминации. При отсутст­вии свободных вьщелений необходимо попросить пациента слегка помассировать уретру скользящими движениями от основания пениса к его головке. В этом случае могут быть использованы ло­жечка Фолькмана или ватный/дакроновый тампон для взятия материала. После введения пластиковой петли в уретру на 1-2 см необходимо плоскость «глазка» петли двигать к отвер­стию, слегка нажимая на стенки уретры. Не рекомендуется вра­щать петлю во время процедуры взятия образца — для пациента это болезненно. После получения клинического материала петля накладывается на поверхность стекла и передвигается по нему несколько раз с легким нажатием. Петля должна оставить на стекле тонкую полоску клинического материала.

Образец из препуциального мешка берется ватным/дакроновым тампоном.

Взятие материала для микроскопии окрашенных препаратов у женщин

Образец из уретры для окрашивания по Граму или метиленовым синим берется с помощью бактериологической петли объе­мом 1 мкл. При наличии большого количества выделений наруж­ное отверстие должно быть очищено с помощью марлевого тампона. При отсутствии свободных выделений может быть про­веден легкий массаж уретры, выполняемый врачом. После введения пластиковой петли в уретру на 1-2 см необходимо плоскость «глазка» петли двигать к отверстию, слегка нажимая на заднюю и боковые стенки уретры. Не рекомендуется вращать петлю во время процедуры взятия образца — для пациентки это болезненно. После получения клинического материала петля накладывается на поверхность стекла и передвигается по нему несколько раз с легким нажатием. Петля должна оставить на стекле тонкую по­лоску клинического материала.

Образец из цервикального канала для приготовления окра­шенных препаратов берется в зеркалах ватным/дакроновым там­поном, специальной щеточкой или ложечкой Фолькмана. Необ­ходимо тщательно очистить наружное отверстие цервикального канала при помощи большого марлевого тампона от вагинальных выделений для предотвращения возможной контаминации. По­сле введения тампона в шеечный канал на 1-2 см его вращают несколько раз. Клинический материал должен быть перенесен с тампона на стекло как можно более тонким слоем.

Для микроскопического исследования окрашенных вагиналь­ных мазков материал берется в зеркалах с заднего или боковых сводов бактериологической петлей 10 мкл или ложечкой Фоль­кмана и тонким слоем распределяется на предметном стекле.

Взятие материала с шейки матки на онкоцитологию

Материал берется из двух отделов: с наружного зева (эктоцервикса) и цервикального канала (эндоцервикса) без предварительной обработки шейки матки тампоном с физиологическим раствором. Пользуются шпателем типа Эйра или любым другим, лучше специальной цитощеткой. Вращательными движениями при легком надавливании получают соскоб со всей поверхности шейки матки и цервикального канала одновременно. Шпателем или щеткой проводят по стеклу — получают две полосы: материал с шейки матки и цервикального канала. При наличии патологии шейки матки берут соскоб непосредственно с участка поражения. При лейкоплакии, эрозии, подозрении на рак необходимо приготовить не менее 2‐3 мазков. В этих случаях удобнее брать мазок под контролем кольпоскопа.

Помните, нельзя намазывать материал толстым слоем — в микроскоп видны только тонкие мазки. Участки с сильным «намазыванием» исключаются из исследования, т. к. невозможно качественно определить, что за тип клеток в получившемся месиве. С другой стороны, не наносите мазок с усилием, в этом случае клетки разрушаются, и в препарате не обнаруживается ничего, кроме обломков клеток.

Протоколы получения и обработки образцов биоматериала

Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала из уретры у мужчин

Порядок забора биоматериала для микроскопического исследования

• Манипуляция проводится стоя или лежа; если переносимость процедуры плохая, пациента следует уложить (усаживать не нужно).
• Промаркировать предметное стекло (наклеить на него штрих-код).
• Попросить пациента оголить головку полового члена путем сдвигания крайней плоти.
• Обработать головку полового члена в области наружного отверстия уретры тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором.
• При наличии свободно стекающих из уретры выделений удалить их сухим тампоном.
• Ввести зонд (тип А) в уретру на глубину 3–4 см (Рисунок 22).

• Несколькими осторожными вращательными движениями в течении 3–5 секунд произвести забор биоматериала (Рисунок 23).
• Вынуть зонд из уретры.
• Биоматериал, взятый с помощью зонда, нанести на предметное стекло. Материал наносится на стекло мягкими движениями, равномерно. Неправильным является нанесение материала толстым слоем, каплей, небольшим мазком.
• Высушить предметное стекло на воздухе при комнатной температуре в течение 30 минут.
• Стекло поместить в пластиковый контейнер с вентиляцией.

Порядок забора биоматериала для исследований методом ПЦР, для посева на урогенитальные инфекции

• Манипуляция проводится стоя или лежа; если переносимость процедуры плохая, пациента следует уложить (усаживать не нужно).
• Выбрать соответствующий контейнер для забора биоматериала. Для исследований методом ПЦР — флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф»). Для посевов выбрать контейнер в соответствии с Таблицей 10.
• Промаркировать контейнер (наклеить на него штрих-код).
• Попросить пациента оголить головку полового члена путем сдвигания крайней плоти.
• Обработать головку полового члена в области наружного отверстия уретры тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором.
• При наличии свободно стекающих из уретры выделений удалить их сухим тампоном.
• Ввести зонд (тип А) в уретру на глубину 3–4 см (Рисунок 22).
• Несколькими осторожными вращательными движениями в течении 3–5 секунд произвести забор биоматериала (Рисунок 23).
• Вынуть зонд из уретры.
• Перенести зонд во флакон/микропробирку со средой.
• Погрузив рабочую часть зонда, вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
• Вынуть зонд из раствора, отжать избыток жидкости, прижимая к стенке флакона/микропробирки, удалить зонд.
  Не допускается оставлять наконечник зонда во флаконе/микропробирке!
• Закрыть флакон/микропробирку.
• Поместить флакон/микропробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Порядок забора биоматериала для посева на микробиологические исследования

• Манипуляция проводится стоя или лежа; если переносимость процедуры плохая, пациента следует уложить (усаживать не нужно).
• Выбрать соответствующий контейнер для забора биоматериала в соответствии с Таблицей 10.
• Открыть упаковку с транспортной средой и зондом, отклеив липкий слой сверху (Рисунок 24).

• Промаркировать транспортную пробирку со средой (наклеить на нее штрих-код).
• Попросить пациента оголить головку полового члена путем сдвигания крайней плоти.
• Обработать головку полового члена в области наружного отверстия уретры тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором.
• При наличии свободно стекающих из уретры выделений удалить их сухим тампоном.
• Снять крышку с транспортной пробирки со средой (Рисунок 25).
• Достать зонд (Рисунок 26).

• Ввести зонд в уретру на глубину 3–4 см (Рисунок 22).
• Несколькими осторожными вращательными движениями в течении 3–5 секунд произвести забор биоматериала (Рисунок 23).
• Вынуть зонд из уретры.
• Поместить зонд в транспортную пробирку со средой, плотно закрыв крышку (Рисунок 27).
• Поместить транспортную пробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала из урогенитального тракта у женщин

Порядок забора биоматериала для микроскопического исследования

• Узнать у пациентки живет ли она половой жизнью (жила раньше?)
• Узнать у пациентки рожала она или нет, для того, чтобы выбрать необходимый размер зеркала. Если пациентка не рожала, необходимо выбрать зеркало «S». Если пациентка рожала, необходимо выбрать зеркало «М».
• Промаркировать предметное стекло (наклеить на него штрих-код).
• Забор биоматериала производится с трех участков: наружное отверстие цервикального канала (C), задний свод влагалища (V), наружное отверстие мочеиспускательного канала (U). Подписать предметное стекло в направлении слева направо водостойким маркером (Рисунок 28).

• Ввести гинекологическое зеркало (зеркало Куско).
• Установить зеркало в положение, при котором наиболее четко возможно осмотреть шейку матки, задний свод влагалища (обнажить шейку в зеркалах).
• Избыток слизи и обильных выделений удалить с помощью пинцета стерильным тампоном.
• Ввести урогенитальный зонд 1 (тип А) в цервикальный канал на глубину 1–2 см, собрать материал осторожными вращательными движениями в течение 3–5 секунд (Рисунок 29).

• Нанести мазок на предметное стекло слева. Материал наносится на стекло мягкими движениями, равномерно. Неправильным является нанесение материала толстым слоем, каплей, небольшим мазком.
• Провести урогенитальным зондом 2 (тип А) по поверхности слизистой влагалища в области заднего свода (Рисунок 30).
• Нанести мазок в центре предметного стекла. Материал наносится на стекло мягкими движениями, равномерно. Неправильным является нанесение материала толстым слоем, каплей, небольшим мазком.
• Извлечь гинекологическое зеркало.
• Ввести урогенитальный зонд 3 (тип А) в уретру на глубину 1–1.5 см, аккуратно, не поранив слизистую, несколькими вращательными движениями произвести соскоб эпителиальных клеток.
• Нанести мазок на предметное стекло справа. Материал наносится на стекло мягкими движениями, равномерно. Неправильным является нанесение материала толстым слоем, каплей, небольшим мазком.
• Высушить предметное стекло на воздухе при комнатной температуре в течение 30 минут.
• Стекло поместить в пластиковый контейнер с вентиляцией.

Порядок забора биоматериала для исследований методом ПЦР, для посева на урогенитальные инфекции

• Узнать у пациентки живет ли она половой жизнью (жила раньше?)
• Узнать у пациентки рожала она или нет, для того, чтобы выбрать необходимый размер зеркала. Если пациентка не рожала, необходимо выбрать зеркало «S». Если пациентка рожала, необходимо выбрать зеркало «М».
• Выбрать соответствующий контейнер для забора биоматериала. Для исследований методом ПЦР — флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф»). Для посевов выбрать контейнер в соответствии с Таблицей 10.
• Промаркировать контейнер (наклеить на него штрих-код).
• Ввести гинекологическое зеркало (зеркало Куско).
• Установить зеркало в положение, при котором наиболее четко возможно осмотреть шейку матки, задний свод влагалища (обнажить шейку в зеркалах).
• Избыток слизи и обильных выделений удалить с помощью пинцета стерильным тампоном.
• Ввести урогенитальный зонд 1 (тип А) в цервикальный канал на глубину 1–2 см, собрать материал осторожными вращательными движениями в течение 3–5 секунд (Рисунок 29).
• Вынуть зонд и перенести его во флакон/микропробирку со средой.
• Погрузив рабочую часть зонда, вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
• Вынуть зонд из раствора, отжать избыток жидкости, прижимая к стенке флакона/микропробирки, удалить зонд.
  Не допускается оставлять наконечник зонда во флаконе/микропробирке!
• Провести урогенитальным зондом 2 (тип А) по поверхности слизистой влагалища в области заднего свода (Рисунок 30).
• Перенести зонд в тот же флакон/микропробирку со средой.
• Погрузив рабочую часть зонда, вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
• Вынуть зонд из раствора, отжать избыток жидкости, прижимая к стенке флакона/микропробирки, удалить зонд.
• Извлечь гинекологическое зеркало.
• Ввести урогенитальный зонд 3 (тип А) в уретру на глубину 1–1.5 см, аккуратно, не поранив слизистую, несколькими вращательными движениями произвести соскоб эпителиальных клеток.
• Перенести зонд в тот же флакон/микропробирку со средой.
• Погрузив рабочую часть зонда, вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
• Вынуть зонд из раствора, отжать избыток жидкости, прижимая к стенке флакона/микропробирки, удалить зонд.
• Закрыть флакон/микропробирку.
• Поместить флакон/микропробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Порядок забора биоматериала для посева на микробиологические исследования

• Узнать у пациентки живет ли она половой жизнью (жила раньше?)
• Узнать у пациентки рожала она или нет, для того, чтобы выбрать необходимый размер зеркала. Если пациентка не рожала, необходимо выбрать зеркало «S». Если пациентка рожала, необходимо выбрать зеркало «М».
• Выбрать соответствующий контейнер для забора биоматериала в соответствии с Таблицей 10.
• Открыть упаковку с транспортной средой и зондом, отклеив липкий слой сверху (Рисунок 24).
• Промаркировать транспортную пробирку со средой (наклеить на нее штрих-код).
• Ввести гинекологическое зеркало (зеркало Куско).
• Установить зеркало в положение, при котором наиболее четко возможно осмотреть шейку матки, задний свод влагалища (обнажить шейку в зеркалах).
• Избыток слизи и обильных выделений удалить с помощью пинцета стерильным тампоном.
• Снять крышку с транспортной пробирки со средой (Рисунок 25).
• Достать зонд (Рисунок 26).
• Провести зондом по поверхности слизистой влагалища в области заднего свода (Рисунок 30).
• Вынуть зонд.
• Поместить зонд в транспортную пробирку со средой, плотно закрыв крышку (Рисунок 27).
• Извлечь гинекологическое зеркало.
• Поместить транспортную пробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала для исследования на энтеробиоз

Порядок забора биоматериала

• Промаркировать предметное стекло (наклеить на него штрих-код).
• Предложить обследуемому лечь на бок, привести колени к животу, раздвинуть ягодицы.
• Собрать соскоб с перианальных складок вокруг ануса методом «отпечатка» в нескольких местах липкой лентой длиной 5 см.
• После получения отпечатка аккуратно наклеить липкую ленту на предметное стекло клейкой стороной вниз.
• Стекло поместить в пластиковый контейнер с вентиляцией.
• Хранение и транспортировка контейнера производятся при комнатной температуре.

Инструкция по получению и обработке ректальных мазков

Порядок забора биоматериала для исследований методом ПЦР

• Промаркировать флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф») (наклеить на него штрих-код).
• Предложить обследуемому лечь на бок, привести колени к животу, раздвинуть ягодицы.
• Открыть упаковку со стерильным зондом (тип А).
• Ввести зонд в задний проход на глубину 4–5 см.
• Аккуратно вращать зонд вокруг оси, собирая материал.
• Осторожно извлечь зонд.
• Перенести зонд во флакон с транспортной средой.
• Погрузив рабочую часть зонда в транспортную среду, вращать зонд в течение 3–5 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
• Вынуть зонд из раствора, прижимая его к стенке флакона и, отжав избыток жидкости, удалить зонд и закрыть флакон.
  Не допускается оставлять наконечник зонда во флаконе!
• Поместить флакон в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Порядок забора биоматериала для микробиологических исследований

• Выбрать соответствующий контейнер для забора биоматериала в соответствии с Таблицей 10.
• Открыть упаковку с транспортной средой и зондом, отклеив липкий слой сверху (Рисунок 24).
• Промаркировать транспортную пробирку со средой (наклеить на нее штрих-код).
• Предложить обследуемому лечь на бок, привести колени к животу, раздвинуть ягодицы.
• Снять крышку с транспортной пробирки со средой (Рисунок 25), достать зонд (Рисунок 26).
• Ввести зонд в задний проход на глубину 4–5 см.
• Аккуратно вращать зонд вокруг оси, собирая материал.
• Осторожно извлечь зонд.
• Поместить зонд в транспортную пробирку со средой, плотно закрыв крышку (Рисунок 27).
• Поместить транспортную пробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов секрета предстательной железы

Забор материала для исследования выполняется врачом-урологом после проведения массажа простаты.

Порядок забора секрета предстательной железы для исследований методом ПЦР

• Промаркировать флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф») (наклеить на него штрих-код).
• После проведения массажа простаты осуществить забор материала из уретры с помощью урогенитального зонда.
• Погрузить рабочую часть зонда во флакон со средой.
• Вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
• Вынуть зонд из раствора, отжать избыток жидкости, прижимая к стенке флакона, удалить зонд и закрыть флакон.
  Не допускается оставлять наконечник зонда во флаконе!
• Хранить и транспортировать флакон с образцом при температуре +2…+8 °С.

Порядок забора секрета предстательной железы для микробиологических исследований

• Выбрать контейнер в соответствии с Таблицей 10.
• Промаркировать контейнер (наклеить на него штрих-код).
• После проведения массажа простаты осуществить забор материала из уретры с помощью урогенитального зонда.
• Поместить зонд в транспортную пробирку со средой, плотно закрыв крышку.
• Хранить и транспортировать транспортную пробирку при температуре +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала из носа

Порядок забора биоматериала для исследований методом ПЦР

• Промаркировать флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф») (наклеить на него штрих-код).
• Открыть упаковку со стерильным зондом (тип А).
• Попросить пациента запрокинуть голову, постараться не двигаться во время произведения забора биоматериала.
• Ввести зонд последовательно в правую и левую ноздрю и вращательными движениями собрать материал с крыльев носа и верхнего угла носового отверстия (Рисунок 31).

• При наличии в полости носа очагов воспаления или изъязвления собрать материал из очагов.
• Перенести зонд во флакон с транспортной средой.
• Погрузив рабочую часть зонда в транспортную среду, вращать зонд в течение 3–5 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
• Вынуть зонд из раствора, прижимая его к стенке флакона и, отжав избыток жидкости, удалить зонд и закрыть флакон.
  Не допускается оставлять наконечник зонда во флаконе!
• Поместить флакон в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Порядок забора биоматериала для микробиологических исследований

• Выбрать контейнер в соответствии с Таблицей 10.
• Открыть упаковку с транспортной средой и зондом, отклеив липкий слой сверху (Рисунок 24).
• Промаркировать транспортную пробирку со средой (наклеить на нее штрих-код).
• Попросить пациента запрокинуть голову, постараться не двигаться во время произведения забора биоматериала.
• Снять крышку с транспортной пробирки со средой (Рисунок 25).
• Достать зонд (Рисунок 26).
• Ввести зонд последовательно в правую и левую ноздрю и вращательными движениями собрать материал с крыльев носа и верхнего угла носового отверстия (Рисунок 31).
• При наличии в полости носа очагов воспаления или изъязвления собрать материал из очагов.
• Вынуть зонд и поместить его в транспортную пробирку со средой, плотно закрыв крышку (Рисунок 27).
• Поместить транспортную пробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала из ротоглотки

Порядок забора биоматериала для исследований методом ПЦР

• Промаркировать флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф») (наклеить на него штрих-код).
• Открыть упаковку со стерильным зондом (тип А).
• Попросить пациента запрокинуть голову, постараться не двигаться во время произведения забора биоматериала.
• Взять зонд в правую руку, в левую взять шпатель.
• Прижать язык пациента к нижней части ротовой полости шпателем.
• Собрать материал, поочередно обрабатывая зондом правую миндалину, правую небную дужку, левую миндалину, левую небную дужку, язычок, на уровне язычка коснуться зондом задней стенки глотки (Рисунок 32).

• При наличии в полости носа очагов воспаления или изъязвления собрать материал из очагов.
• Перенести зонд во флакон с транспортной средой.
• Погрузив рабочую часть зонда в транспортную среду, вращать зонд в течение 3–5 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
• Вынуть зонд из раствора, прижимая его к стенке флакона и, отжав избыток жидкости, удалить зонд и закрыть флакон.
  Не допускается оставлять наконечник зонда во флаконе!
• Поместить флакон в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Порядок забора биоматериала для микробиологических исследований

Для исследования на дифтерию забор биоматериала осуществляется из зева и носа!
Не допускается собирать материал из ротоглотки при воспаленном надгортаннике, так как проведение процедуры может привести к серьезной респираторной обструкции.
При взятии пробы нельзя касаться тампоном слизистых щек, языка, десен, губ.

• Выбрать контейнер в соответствии с Таблицей 10.
• Открыть упаковку с транспортной средой и зондом, отклеив липкий слой сверху (Рисунок 24).
• Промаркировать транспортную пробирку со средой (наклеить на нее штрих-код).
• Попросить пациента запрокинуть голову, постараться не двигаться во время произведения забора биоматериала.
• Снять крышку с транспортной пробирки со средой (Рисунок 25).
• Достать зонд (Рисунок 26).
• Взять зонд в правую руку, в левую взять шпатель.
• Прижать язык пациента к нижней части ротовой полости шпателем.
• Собрать материал, поочередно обрабатывая тампоном правую миндалину, правую небную дужку, левую миндалину, левую небную дужку, язычок, на уровне язычка коснуться зондом задней стенки глотки (Рисунок 32).
• При наличии в полости носа очагов воспаления или изъязвления собрать материал из очагов.
• Вынуть зонд и поместить его в транспортную пробирку со средой, плотно закрыв крышку (Рисунок 27).
• Поместить транспортную пробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов биоматериала с конъюнктивы

Порядок забора биоматериала для исследований методом ПЦР

• Промаркировать флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф») (наклеить на него штрих-код).
• Открыть упаковку со стерильным зондом (тип А).
• Попросить пациента запрокинуть голову, постараться не двигаться во время произведения забора биоматериала.
• Большим пальцем левой руки опустить нижнее веко одного из глаз, одновременно приподнимая указательным пальцем верхнее веко того же глаза, максимально обнажая конъюнктиву.
• Стерильным зондом, находящимся в правой руке, сделать 2–3 круговых движения по конъюнктиве глаза, не касаясь им ресниц (Рисунок 33).

• Перенести зонд во флакон с транспортной средой.
• Погрузив рабочую часть зонда в транспортную среду, вращать зонд в течение 3–5 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
• Вынуть зонд из раствора, прижимая его к стенке флакона и, отжав избыток жидкости, удалить зонд и закрыть флакон.
  Не допускается оставлять наконечник зонда во флаконе!
• Поместить флакон в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Порядок забора биоматериала для микробиологических исследований

• Выбрать контейнер в соответствии с Таблицей 10.
• Открыть упаковку с транспортной средой и зондом, отклеив липкий слой сверху (Рисунок 24).
• Промаркировать транспортную пробирку со средой (наклеить на нее штрих-код).
• Попросить пациента запрокинуть голову, постараться не двигаться во время произведения забора биоматериала.
• Снять крышку с транспортной пробирки со средой (Рисунок 25), достать зонд (Рисунок 26).
• Большим пальцем левой руки опустить нижнее веко одного из глаз, одновременно приподнимая указательным пальцем верхнее веко того же глаза, максимально обнажая конъюнктиву.
• Стерильным зондом, находящимся в правой руке сделать 2–3 круговых движения по конъюнктиве глаза, не касаясь им ресниц (Рисунок 33).
• Вынуть зонд и поместить его в транспортную пробирку со средой, плотно закрыв крышку (Рисунок 27).
• Поместить транспортную пробирку в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов буккального (щечного) эпителия

Порядок забора биоматериала

• Подготовить флакон с транспортной средой ПЦР («Эппендорф») и два стерильных зонда (тип А) (или любой другой аналогичный образец).
• Промаркировать флакон (наклеить на него штрих-код).
• Вскрыть стерильную упаковку первого зонда.
• Попросить пациента запрокинуть голову, открыть рот и постараться не двигаться во время процедуры забора.
• Ввести зонд в полость рта в щечно-десневой карман (в этом месте скапливается большое количество слущенного эпителия), слегка прижать его рукой снаружи, зажав между щекой и десной (Рисунок 34).

• Возвратно-поступательными движениями, вращая зонд пол-оборота вправо, пол-оборота влево провести несколько раз (не менее 5), собирая клетки внутреннего эпителия.
• Вывести зонд из полости рта и перенести его во флакон.
• Погрузив рабочую часть зонда в транспортную среду, вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
• Вынуть зонд из раствора, прижимая его к стенке флакона и, отжав избыток жидкости, удалить зонд.
• Вскрыть стерильную упаковку второго зонда и повторить процедуру забора для другой щеки, собирая материал в тот же флакон.
• Плотно закрыть флакон.
• Поместить флакон в холодильник с температурой +2…+8 °С.

Инструкция по получению и обработке образцов ресниц

Забор материала для исследования ресниц производится только лечащим врачом-офтальмологом!

Порядок сбора ресниц для микроскопического исследования на наличие клещей рода Demodex

Вариант 1

• Промаркировать предметное стекло (наклеить на него штрих-код).
• Капнуть на предметное стекло 1 каплю глицерина.
• Погрузить в каплю 6 ресниц из предполагаемого очага воспаления.
• Накрыть препарат покровным стеклом.
• Поместить предметное стекло в пластиковый контейнер с вентиляцией.
• Контейнер хранить и транспортировать при температуре +2…+8 °С.

Вариант 2

• Промаркировать микропробирку типа «Эппендорф» (наклеить на нее штрих-код).
• Накапать в микропробирку 1–2 капли глицерина.
• Поместить в глицерин на дно микропробирки 6 ресниц из предполагаемого очага воспаления.
• Плотно закрыть крышку микропробирки.
• Микропробирку хранить и транспортировать при температуре +2…+8 °С.

Протоколы получения и обработки образцов биологического материала для цитологических исследований

Инструкция по получению и обработке мазков (соскобов) с поверхности шейки матки (наружного маточного зева) и цервикального канала на атипию

Порядок забора биоматериала

Не допускается взятие мазков после обработки шейки матки раствором уксусной кислоты или Люголя, так как полученный материал будет содержать только лизированные клетки и станет непригоден для исследования!

Микроскопическое исследование отделяемого мочеполовых органов женщин (микрофлора), 3 локализации

Это исследование, называемое также "мазок на флору", позволяет определить состав микрофлоры мочеполовых органов женщины (уретры, влагалища и цервикального канала), количество лейкоцитов, эпителия и их соотношение, количество слизи и морфологический тип бактерий, а также выявить ряд специфических возбудителей, таких как грибы рода Candida, трихомонады и гонококки.

Синонимы русские

Исследование на микробиоценоз влагалища с микроскопией, урогенитальный мазок на микрофлору.

Синонимы английские

Gram's Stain. Bacterioscopic examination of smears (vaginal, cervical, urethral).

Метод исследования

Какой биоматериал можно использовать для исследования?

Мазок из половых путей женщины.

Как правильно подготовиться к исследованию?

Женщинам рекомендуется сдавать анализ до менструации или через 2-3 дня после ее окончания.

Общая информация об исследовании

Микроскопическое исследование мазка у женщин позволяет полуколичественно оценить общую микробную обсемененность, состояние эпителия влагалища, наличие и выраженность воспаления (по лейкоцитарной реакции), состав микрофлоры, а также выявить молочницу, трихомониаз и гонорею. Этот метод является "золотым стандартом" для диагностики бактериального вагиноза (чувствительность – 100 %). Норма мазка на флору определяется следующими показателями:

• должен присутствовать плоский эпителий, его отсутствие может быть связано с атрофией эпителиальных клеток, с недостатком эстрогенов или избытком мужских половых гормонов,
• количество лейкоцитов не должно превышать 15 в поле зрения, его увеличение указывает на воспалительный процесс,
• слизь,
• палочки (бациллы) в мазке составляют нормальную микрофлору влагалища,
• кокки и диплококки – выявление грамотрицательных диплококков в мазке свидетельствует о гонорее,
• "ключевые", или атипичные, клетки характерны для дисбактериоза влагалища,
• споры или мицелий грибов свидетельствует о кандидозе (молочнице),
• наличие подвижных бактерий в нативном мазке (трихомонад) характерно для трихомониаза, выявляются при кровотечениях из матки, эрозиях или новообразованиях.

Для чего используется исследование?

• Чтобы оценить состав микрофлоры мочеполовой системы.
• Для диагностики бактериального вагиноза.
• Для выявления некоторых специфических инфекций, передающихся половым путем (кандидоза, трихомониаза, гонореи).

Когда назначается исследование?

• При симптомах дисбиоза или воспалительных заболеваний органов мочеполовой системы.
• При профилактических осмотрах.

Что означают результаты?

Референсные значения для различных видов микроорганизмов зависят от их локализации (точки взятия биологического материала).

На основании микроскопической картины выделяют 4 типа микробиоценоза влагалища.

Тип микробиоценоза

Общая информация об исследовании

Доминирование лактобацилл, отсутствие грамотрицательной микрофлоры, спор, мицелия и псевдогифов, наличие единичных лейкоцитов и "чистых" эпителиальных клеток. Такой тип мазка у женщин является вариантом нормы.

Умеренное или сниженное количество лактобацилл, наличие грамположительных кокков и грамотрицательных палочек, лейкоцитов, моноцитов, макрофагов, эпителиальных клеток. Этот тип мазка на флору часто наблюдается у здоровых женщин и редко сопровождается явными симптомами.

Незначительное количество или полное отсутствие лактобацилл, обильная полиморфная грамотрицательная и грамположительная палочковая и кокковая микрофлора, наличие "ключевых" клеток, вариабельное количество лейкоцитов, отсутствие или незавершенность фагоцитоза. Вместе с этим часто обнаруживаются гарднереллы, микоплазмы, уреаплазмы, вибрионы рода Mobiluncus, анаэробные кокки.

Полимикробная картина мазка с большим количеством лейкоцитов, макрофагов, эпителиальных клеток, с выраженным фагоцитозом и практически полным отсутствием лактобацилл. При обнаружении возбудителей специфических инфекций (гонококков, трихомонад, псевдогифов споры) можно предполагать наличие гонореи, трихомониаза или кандидозного вагинита.

Что может влиять на результат?

Местное применение антисептиков, антибактериальных, противогрибковых и противозачаточных препаратов.

Представляем Вашему вниманию тест портала НМО (непрерывного медицинского образования) по теме «Средний медицинский персонал как первичное звено в выявлении основных видов инфекций, передаваемых половым путем (ИППП)″ с ответами по алфавиту. Данный тест с ответами по теме «Средний медицинский персонал как первичное звено в выявлении основных видов инфекций, передаваемых половым путем (ИППП)″ позволит Вам успешно подготовиться к итоговой аттестации по направлению «Сестринское дело».

1. Бактериальные возбудители ИППП

1) герпес;
2) гонорея; +
3) кандидоз;
4) хламидиоз. +

2. Биологические среды, в которых размножаются ИППП

1) влагалищные выделения; +
2) кровь; +
3) слюна;
4) сперма. +

3. Биологические среды, подлежащие обследованию на ВПЧ

1) влагалищные выделения; +
2) кровь; +
3) моча;
4) сперма.

4. ВПЧ высокого онкогенного риска

1) 11;
2) 16; +
3) 18; +
4) 40.

5. ВПЧ низкого онкогенного риска

1) 11; +
2) 33;
3) 58;
4) 6. +

6. Возбудитель гонореи — это

1) аэроб;
2) гонококк; +
3) диплококк;
4) стрептококк.

7. Возбудитель трихомонадного кольпита относится к

1) бактериям;
2) вирусам;
3) грибковым;
4) протозойным. +

8. Возраст проведения вакцинации для профилактики ВПЧ

1) от 10 до 25 лет;
2) от 12 до 20 лет;
3) от 7 до 18 лет;
4) от 9 до 26 лет. +

9. Вторичные симптомы проявления генитального герпеса в области поражения

1) пузырьки, наполненные гнойным содержимым;
2) пузырьки, наполненные прозрачной жидкостью; +
3) язвочки с белесоватым оттенком;
4) язвочки с красноватым оттенком. +

10. Высокая вероятность заражения плода герпесом

1) в первом триместре;
2) в послеродовом периоде;
3) в третьем триместре; +
4) во время родов. +

11. Для профилактики ИППП применяются препараты

1) бактерицидные; +
2) десенсибилизирующие;
3) противовенерические; +
4) противогрибковые.

12. Заболевания, причиной которых может быть уреаплазма

1) воспалительные заболевания матки и придатков; +
2) конъюнктивит;
3) мочекаменная болезнь; +
4) уретрит. +

13. Забор материала на мазок для микроскопии производится из

1) боковых стенок влагалища;
2) заднего свода влагалища; +
3) прямой кишки;
4) уретры.

14. Забор материала у женщин для исследования методом ПЦР производится из

1) заднего свода влагалища;
2) прямой кишки;
3) уретры; +
4) цервикального канала. +

15. ИППП вирусной этиологии

1) ВПЧ; +
2) гарднереллез;
3) герпес; +
4) кандидоз.

16. ИППП характеризуется поражением

1) мочеполовых органов; +
2) пищеварительной системы;
3) центральной нервной системы;
4) эндокринной системы.

17. ИППП, вызываемые дрожжевидными грибами

1) герпес;
2) гонорея;
3) кандидоз; +
4) хламидиоз.

18. ИППП, при котором возможен бытовой путь заражения

1) гарднерелла;
2) гонорея;
3) трихомонада; +
4) хламидия.

19. Инкубационный период генитального герпеса

1) 1-5 суток;
2) 1-9 суток;
3) 2-10 суток; +
4) 3-7 суток.

20. Инструменты для забора материала мазка для микроскопии

1) гинекологический шпатель; +
2) кюретка;
3) ложка Фолькмана; +
4) цитощетка. +

21. Исследование на ИППП проводится после незащищенного полового акта не ранее

1) 1 недели;
2) 2 недель;
3) 3 недель; +
4) 4 недель.

22. Клинические проявления трихомонадного кольпита

1) боли и рези при мочеиспускании; +
2) боли отдающие в прямую кишку;
3) обильные желтые выделения из влагалища с неприятным запахом; +
4) обильные слизистые выделения из влагалища без запаха.

23. Кратность проведения вакцинации для профилактики ВПЧ

1) двукратно с интервалом 1-3 месяца;
2) однократно;
3) трехкратно с интервалом 2-4 месяца;
4) трехкратно с интервалом 2-6 месяцев. +

24. Медикаментозная профилактика ИППП возможна

1) в течение нескольких дней после незащищенного полового акта; +
2) не зависит от срока давности;
3) по назначению врача; +
4) самостоятельно без рекомендаций врача.

25. Метод родоразрешения при наличии герпетической инфекции у беременной

1) вакуум-экстракция;
2) кесарево сечение; +
3) наложение акушерских щипцов;
4) через естественные родовые пути.

26. Осложнения у женщин при заболевании гонореей

1) бесплодие; +
2) воспалительные заболевания матки; +
3) воспалительные заболевания органов дыхания;
4) воспалительные заболевания придатков. +

27. Основная локализация остроконечных кондилом у женщин

1) большие и малые половые губы; +
2) задняя спайка губ; +
3) наружное отверстие мочеиспускательного канала; +
4) прямая кишка.

28. Основная локализация остроконечных кондилом у мужчин

1) головка полового члена; +
2) крайняя плоть; +
3) отверстие мочеиспускательного канала; +
4) прямая кишка.

29. Основной путь передачи ИППП

1) бытовой;
2) воздушно-капельный;
3) гематогенный;
4) половой. +

30. Основные клинические появления ВПЧ

1) дисплазия; +
2) кандидоз;
3) остроконечные кондиломы; +
4) папилломатоз. +

31. Основные симптомы при ИППП

1) выделения из половых путей; +
2) жжение при мочеиспускании; +
3) зуд в области половых путей; +
4) повышение температуры.

32. Основные способы диагностики ИППП

1) ПЦР; +
2) бактериологический;
3) микроскопический; +
4) цитологический.

33. Первичные симптомы проявления генитального герпеса в области поражения

1) боль; +
2) жжение; +
3) отечность; +
4) покраснение.

34. Препараты для проведения профилактики ВПЧ

1) вифирон;
2) гардасил; +
3) церварикс; +
4) цефикон.

35. При прохождении через родовые пути у новорожденного от матери, больной гонореей, возникает

1) гонококковый дерматит;
2) гонококковый конъюнктивит; +
3) гонококковый проктит;
4) гонококковый фарингит.

36. Пути заражения уреаплазмозом

1) бытовой;
2) во время родов; +
3) воздушно-капельный;
4) половой. +

37. Пути передачи ВПЧ

1) бытовой путь;
2) во время родов; +
3) непосредственный контакт с инфицированным больным; +
4) половой путь. +

38. Тяжелые осложнения герпеса новорожденного

1) глухота;
2) неврологические нарушения; +
3) слепота;
4) смерть новорожденного. +

39. Факторы, способствующие развитию кандидоза

1) беременность; +
2) вакцинация;
3) прием антибиотиков широкого спектра действия; +
4) сахарный диабет. +

40. Формы кондилом по внешнему виду

1) округлые;
2) ороговевающие; +
3) остроконечные; +
4) плоские. +

41. Характерные выделения из половых путей при кандидозе

1) желтоватые;
2) кровянистые;
3) слизистые;
4) творожистые. +

42. Характерные выделения при гонорее

1) желтовато-белые; +
2) кровянистые;
3) слизистые;
4) творожистые.

43. Характерные жалобы при наличии кондилом в области локализации

1) боль; +
2) выделения из половых путей;
3) дискомфорт; +
4) зуд. +

44. Экстренная профилактика эффективна после незащищенного полового акта в первые

1) 1-2 часа;
2) 12 часов;
3) 2-4 часа; +
4) 3-5 часов.

Инструменты для забора материала мазка для микроскопии

Вы не можете посетить текущую страницу по причине:

1. просроченная закладка/избранное
2. поисковый механизм, у которого просрочен список для этого сайта
3. пропущен адрес
4. у вас нет права доступа на эту страницу
5. Запрашиваемый ресурс не найден.
6. В процессе обработки вашего запроса произошла ошибка.

Пожалуйста, перейдите на одну из следующих страниц:

Если проблемы продолжатся, пожалуйста, обратитесь к системному администратору сайта и сообщите об ошибке, описание которой приведено ниже..

Читайте также:

  
• Цемент вред для здоровья
  
• Круглая плитка своими руками
  
• Прикроватная тумба code на цоколе цвета сланец
  
• Формы для испытания цемента
  
• Грунтовка для шифера под покраску